Servicios de apoyo a la investigación

• Microscopios Nikon de campo claro e inmunofluorescencia con sistema de análisis de imagen (Analysis®), microfotografía y contraste de fases de Normarsky.
• Cultivo de parásitos: Campanas de seguridad biológica tipo II (Faster BHA-36®), estufas de cultivo a varias temperaturas con y sin CO2 (Controltecnica, Heracell®) .
• Centrífugas de bioseguridad con cestillos autoclavables (Megafuge 2.0R®, Heraeus).
• Microcentrifugas (Biofuge primo R®, Heraeus) y agitador-disruptor (Fast-Prep 24®, MP Biomedicals).
• Baños de agua, placas calefactoras, agitadores orbitales y de balancín. PHmetros, balanzas.
• Neveras y congeladores de -40ºC y -80ºC.
• Equipos completos para PAGE y transferencia para WB.
• Lectores de placas de ELISA.
• Termocicladores PCR System 9700 Gene Amp®, Real Time PCR: Stratagene Mx3000P® (Agilent Technologies).
• Sistema de concentración de agua: IDEEX Filta-Max® Automático – FMC 11003.

• Diagnóstico parasitológico de rutina en muestras clínicas de origen humano y animal:
  1. Análisis coprológico directo y tras concentración.
  2. Tinciones permanentes: Tricrómico, Negro de Clorazol y Kinyoun.
  3. Determinación de anticuerpos frente a Toxoplasma y Leishmania.
• Diagnóstico parasitológico especializado en muestras humanas, animales y ambientales:
  1. Microsporidios: Tinción de tricrómico modificado, IFI y PCR.
  2. Cryptosporidium : PCR.
  3. Cyclospora: Tinción de safranina y PCR.
  4. Entamoeba histolytica y Entamoeba dispar: PCR.
  5. Diagnóstico de Toxocariosis visceral y ocular mediante ELISA y WB.
  6. Malaria: tinción de frotis sanguíneo con Giemsa e inmunocromatografía.
  7. Trichomonas vaginalis: cultivo y tinción.
  8. Amebas de vida libre:
     1. Acanthamoeba: Tinción de tejidos, IFI, RT-PCR y cultivo.
     2. Ballamuthia: Tinción de tejidos, IFI, RT-PCR y cultivo.
     3. Naegleria: RT-PCR.

• Catálogo interactivo de la SAI de Parasitología

Dra. Dña. Ángela Magnet Dávila.
angela.magnetdavila@ceu.es

• TECNICAS MICROBIOLÓGICAS
  • CULTIVO: Identificación, antibiograma y antifungigrama:
    • VITEK 2 Systems©
    • Sistema ATB plus; ATB-EXPRESSION.
  • ELISA: Sistema VIDAS©.
  • PCR: Termociclador MJ mini BioRad®; Fuentes de electroforesis Power PAC 300 BioRad®; Cubetas de electroforesis: Sub-Cell GT©.
  • PFGE (Pulsed Field Gel Electrophoresis): Chef-DR II System BioRad®; Chef-DR III System BioRad®.
• ANALISIS DE GELES (Biología molecular): GEL-DOC BioRad® 2007.
• DIAGNOSTICO MICROSCOPICO
  • Microscopios: Nikon-optiphot®.
  • Captación fotográfica y análisis informático de imágenes microscópicas.
• EQUIPAMIENTO GENERAL
  • Esterilidad: Autoclaves. AUTESTER-Selecta®.
  • Seguridad biológica: Cabina de seguridad biológica tipo III. Faster® BH-EN 2004.
  • Cultivo microbiano: Estufas. Selecta®.
  • Densitómetro: Densimat©.
  • Pipetas: Gilson®.
  • Centrífugas: Mikro 24-48R. Hettich®.

• DIAGNOSTICO MICROBIOLÓGICO
  • Diagnostico microscópico
  • Cultivo: Sistemas manuales, semiautomáticos y automáticos.
• CARACTERIZACIÓN MICROBIANA
  • Técnicas bioquímicas, inmunológicas y moleculares.

Dr. D. Pedro Antonio Jiménez Gómez.
pedro.jimenezgomez@ceu.es

RTV

• Dos estudios de radio.
• Dos platós de televisión.
• Tres salas de postproducción de vídeo equipadas con los paquetes de Final Cut Studio y Adobe CS6.
• Equipos ENG Full HD y complementos (pértigas, monitores portátiles, grabadoras digitales de sonido, micrófonos de diversos tipos, etc.).
• Sistemas de iluminación continua.

Fotografía

• Un plató de fotografía con fondos cromáticos multifunción para producciones, de 2.75 x11m.
• Mesa de bodegones.
• Equipos digitales full frame con transmisión WiFi .
• Sistema de iluminación instantánea Elinchrom con accesorios (Reflectores, Quadralite, Octalite, Snoot, difusores, etc.).

• Soporte y asesoramiento en el uso del equipamiento del SAI.
• Desarrollo de programas piloto en radio o televisión para investigación de tendencias audiovisuales.
• Formación de portavoces en RTV.
• Formación técnica en RTV.

Dra. Dña. Laura González Díez
design@ceu.es

Dr. D. Mario Alcudia Borreguero
malcuadia@ceu.es

• 2 Cámaras climáticas Vötsch de 570 L de capacidad para trabajar en un rango de temperaturas desde 10ºC a 90 ºC y un rango de humedad relativa desde el 30% hasta el 90%.

• Almacenamiento controlado, armonizado y trazable de productos farmacéuticos en su fase de registro y comercialización o bien cualquier otro material como materias primas, material de acondicionamiento, productos intermedios, cosméticos y productos sanitarios.

Dra. Dña. Nuria Salazar Sánchez.
n.salazar@ceu.es

• Equipación de Farmacología general.
• Proteómica (fuente de Isoelectroenfoque “Protean IEF Cell”; cubeta para electroforesis bidimensional “Protean Plus Dodeca Cell”; teñidor automático de geles Dodeca Stainer”: permite teñir 12 geles a la vez; software de análisis de imagen PD-Quest 8.0.1).
• Equipo de electrofisiología “in vitro” de registro extracelular.
• Farmacología “in vitro” (baños de órganos con estimulación; transductores de fuerza y presión; agitador de microplacas; incubador de microplacas; lector de microplacas).
• Neuropsicofarmacología (caja de condicionamiento preferencial al sitio; cajas de evitación pasiva; cajas para el reconocimento de objetos de rata y de ratón; laberinto elevado en cruz; laberinto en “Y”, etc).
• Analgesia e inflamación (placa caliente; tail-flick; Randall-Selitto; estimuladores; pletismómetro).
• Farmacología cardiovascular (transductores de presión y ECG; sistema digital de registro y análisis de parámetros cardiovasculares; medidor de presión arterial incruenta).
• Farmacología ocular (tonómetro de contacto).

• Técnicas generales de Farmacología (test de Irwin y similares en la rata y el ratón; ensayo de fijación de radioligandos; enálisis de proteínas y caracterización por Western-Blot; ensayos de actividades enzimáticas).
• Proteómica (análisis masivo de la expresión diferencial de proteínas en órganos y fluidos; estudio de la expresión de fosfoproteínas).
• Farmacología del sistema nervioso periférico (anestesia local en el conejo).
• Farmacología del sistema nervioso central (efectos de los fármacos sobre el aprendizaje y la memoria; microdiálisis cerebral; cultivos primarios de tejido nervioso fetal de rata; inmunohistoquímica; registro de potenciales sinápticos extracelulares en rodajas de tejido nervioso).
• Psicofarmacología (actividad antidepresiva; actividad antipsicótica; valoración de fármacos antiparkinsonianos; actividad ansiolítica; tolerancia y dependencia “in vivo” y "ex vivo"; potencial adictivo; ensayos de aprendizaje y memoria).
• Farmacología del dolor y de la inflamación (tests de analgesia con estimulación térmica; tolerancia al efecto analgésico opioide; edema inducido por carragenina y traumatismo; granuloma inducido por implantación de "pellets" en la rata; artritis inducida, etc.).
• Farmacología gastrointestinal (vaciamiento gástrico; tránsito intestinal; actividad contráctil; secreción gástrica ácida y de pepsina; actividad antiulcerosa; absorción intestinal).
• Farmacología cardiovascular (parámetros hemodinámicos en la rata; permeabilidad capilar en el ratón; determinación de la función vascular en arterias aisladas).
• Farmacología renal (proteinuria y aclaramiento de creatinina en la rata y actividad diurética).
• Metabolismo (actividad hipolipemiante; actividad hipoglucemiante; bioquímica plasmática; modelos de obesidad inducida; actividades enzimátricas; ensayos de resistencia a leptina; ciclo del glutation).
• Inmunología (sensibilización con alergenos; modelos autoinmunes).
• Farmacología ocular (valoración de la presión intraocular; actividad midriática y miótica).

Dra. Dña. Lidia Morales Goyanes.
lmorgoy@ceu.es

• Microscopios Nikon de campo claro y contraste de fases. Microfotografía.
• Campanas de Cultivo. Seguridad Biológica Tipo II (Faster BHA-3 ®).
• Estufas de Cultivo diferentes temperaturas (Controltecnia , Heracell ®).
• Incubadores de Cultivo diferentes porcentajes CO2, diferentes temperaturas (Controltecnia , Heracell ®).
• Centrífugas de Bioseguridad con Cestillos Autoclavables . (Multifuge 3SR+Heraeus ®).
• Microcentrifugas (Biofuge primo R ®, Heraeus ®).
• Baños Termostatizados, Placas Calefactoras, Agitadores Vortex, Phmetros, Balanzas.
• Neveras 4ºC y Congeladores -20ºC y -80ºC.
• Purificación de spanO MiliRo y MiliQ.
• Tanque N2 Líquido.
• Autoclave, Horno, Termodesinfectadora Miele.

• Laboratorio de cultivos con infraestructura adecuada para los métodos generales de cultivo celular:
  1. Cultivo Células Eucariotas (mamífero/insecto).
  2. Cultivos de Protozoos (nivel de seguridad P2).
  3. Cultivos de Virus (nivel de seguridad P2).
• Preparación de medios de cultivos y complementos.
• Proceso de esterilización de medios y sólidos/ Autoclave.
• Realización de alícuotas de reactivos/ Descomplementación Sueros.
• Crioconservación de líneas celulares, muestras y cepas en N2 líquido.
• Congelación, descongelación y mantenimiento de líneas celulares.
• Pruebas Diagnóstico Contaminación Mycoplasma/Tratamiento de eliminación y prevención.
• Mantenimiento de medio y reactivos en Cámaras de 4ºC, -20ºC y 80ºC.
• Lavado de Material Reutilizable Estéril/Eliminación de Residuos Biológicos.
• Otras técnicas por petición especificar.
• Formación en técnicas de cultivos celulares (modalidad básica y avanzada) individual y grupos.

Dra. Carolina Hurtado Marcos
Carolina.hurtadomarcos@ceu.es

Sergio Llorens Berzosa
Técnico de Laboratorio
scultivos@ceu.es

• Espectrómetro de Masas de Trampa de Iones Bruker, modelo Esquire 3000 (Acoplado a HPLC 1100 Agilent technologies con interfases ESI, APCI).
• Espectrómetro de Masas Q-TOF Agilent Technologies, modelo 6520 (Acoplado a HPLC 1200 Agilent technologies con interfase ESI).
• Espectrómetro de Masas Q-TOF Agilent Technologies, modelo 6550 (Acoplado a HPLC 1290 Infinity Agilent technologies con interfases de ESI, Jet Stream).
• Espectrómetro de Masas QQQ Agilent Technologies, modelo 6460 (Acoplado a HPLC 1290 Infinity Agilent Technologies con interfase de ESI, Jet Stream).
• Espectrómetro de Masas de Trampa de Iones VARIAN, modelo SATURN 2100T (Acoplado a GC VARIAN modelo 3900).
• Espectrómetro de Masas de cuadrupolo simple , Agilent Technologies, modelo 5975C (Acoplado a GC Agilent Technologies, 7890).
• Espectrómetro de Masas TOF Agilent Technologies, modelo 6224 (Acoplado a CE Agilent Technologies, modelo 7100 con interfase ESI).

• Análisis de todo tipo de muestras: aplicaciones clínicas, medioambientales, bioquímicas, farmacológicas y en alimentos.
• Determinación de masas moleculares masas (50- 20.000 Da) y adquisición de espectros de masas de nuevos compuestos orgánico e inorgánicos, por inyección directa con fuentes ESI y APCI, tanto en modo positivo como negativo.
• Adquisición de espectros MSn.
• Obtención de espectros de masas con masa exacta, en ESI positivo y negativo.
• Interpretación de dichos espectros.
• Desarrollo de métodos analíticos HPLC/MS.
• Desarrollo de métodos analíticos GC/MS.
• Desarrollo de métodos analíticos EC/MS.
• Cuantificación de analitos en muestras complejas.

Dra. Dña. Antonia García Fernández.
antogar@ceu.es

• Composición corporal
  1. Pletismografo por desplazamiento de aire (BODPOD®)
  2. Boimpedancia eléctrica multifrecuencia (Bioscan Spectrum, Biologica)
  3. Densitometría ósea por ultrasonidos (Modelo Sahara, Hologic)
  4. Interactancia por Rayos Infrarrojos (Futrex® 6100)
  5. Técnicas antropométricas (antropometristas nivel ISAK-3)
• Análisis del Metabolismo
  1. Metabolimetro Oxycom Delta Jaegger
  2. Cicloergómetro para análisis del metabolismo en esfuerzo
• Análisis del gasto energético en actividad física.
  1. Acelerómetros (GT3X+, ActiGraph®).
• Análisis de la Dieta
  1. Programas DIAL y Alimentación y Salud

La Unidad de Metabolismo y Composición Corporal constituye, en síntesis, una unidad equipada para llevar a cabo proyectos de investigación que precisen evaluar el estado nutricional, gasto energético y composición corporal en poblaciones sanas o con patologías, de una manera integral y holística.

La evaluación de los diferentes compartimentos corporales, en particular del porcentaje de grasa corporal, es esencial en investigación o en la práctica diaria de profesionales de la salud y del deporte; El estudio detallado de la morfología ayuda a:

• Identificar el nivel de riesgo asociado a un exceso o un defecto en el compartimento graso (obesidad o desnutrición)
• Monitorizar los cambios asociados a determinadas patologías
• Formular recomendaciones dietéticas y de actividad física y evaluar la eficacia de las mismas
• Evaluar el impacto de nuevos alimentos.
• Estimar el peso saludable y la composición adecuada para cada deporte y grado de actividad deportiva.
• Monitoriza crecimiento, desarrollo, maduración y cambios asociados al envejecimiento

La Unidad Metabólica dispone del equipamiento necesario para determinar la composición corporal con precisión en todo tipo de poblaciones y situaciones fisiopatológicas; destacando el aparato de pletismografía por desplazamiento de aire (BODPODÒ), que determina el porcentaje de grasa corporal con un error de ±2% y que se complementa con otras técnicas como la bioimpedancia eléctrica; Densitometría ósea por ultrasonidos y técnicas antropométricas.

Por otro lado mediante calorimetría indirecta se puede averiguar las necesidades calóricas de un individuo así como del tipo de nutrientes que se utilizan preferentemente para cubrirlas, en reposo y en actividad

El análisis de la dieta, permite finalmente completar la evaluación cuantitativa y cualitativa de la ingesta, tanto para conocer su adecuación a las recomendaciones como para conocer su posible impacto e interrelación con posibles intervenciones experimentales.

Dra. Dña. Ángela García González.
anargon@ceu.es

• Irradiación de muestras. Calibración monitores de radiación y espectrometría gamma.
• Fuente de Co-60 (5 mC), fuentes de baja dosis para calibración (Ra-226, Cs-137, C-14…), Generador de Rayos X (70 KVp).
• Espectrómetro Gamma (detector de Germanio marca Ortec), medidores calibrados de radiación gamma (marca Victoreen), beta (marca Eberline) y rayos X (marca Unfors).
• Soporte de instrumentación y medida:
  1. Instrumentación óptica (bancos, polarizadores, prismas, láseres, lámparas, lámpara calibrada de tungsteno).
  2. Instrumentación electrónica (osciloscopios analógicos y digitales, multímetros, fuentes de alimentación, generadores de funciones).
  3. Instrumentación de medida de radiaciones ionizantes (gamma, beta, rayos X).

• Irradiación a bajas dosis de muestras mediante radiación gamma (fuente de Co-60) y Rayos X (70 kVp).
• Calibración de detectores de radiación gamma (energías Co-60).
• Obtención de espectros de radiación gamma (detector de Ge) de muestras del cliente.
• Soporte y asesoramiento de instrumentación y medida: estudio y optimización de sistemas de medida, alquiler de equipos, cálculo de blindajes, software, etc.
• Utilización de los recursos del laboratorio: la persona interesada puede utilizar, acompañada por algún miembro de la unidad, los recursos del laboratorio.
• Colaboraciones en proyectos y participación en formación especializada de protección radiológica.

Dr. D. Carlos Bocos de Prada.
carbocos@ceu.es

Dr. D. Javier Manrique Rosel.
jamanros@ceu.es